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蛋白質組學/實驗方案/植物蛋白質組學關於二維凝膠電泳

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二維凝膠電泳 1. 取4個試管,一側用保鮮膜覆蓋。 2. 製備吸管凝膠緩衝液。 3. 在加入兩性電解質前,用手搖晃直到溶解。 4. 用注射器混合均勻。 5. 用注射器將吸管凝膠緩衝液注入玻璃管中。 6. 保持至少6小時。 7. 植物樣品製備 • 取成熟種子。 • 倒入液氮。 • 用研缽和研杵研磨。 • 在使用前將裂解緩衝液加入樣品中,裂解緩衝液在水浴中於1000℃加熱3分鐘。 • 將樣品置於冰上,用Vibra Cells混合。 • 離心沉澱。 • 在70℃下離心20分鐘。 • 取白蛋白和白蛋白標準品(DDW:Bradford = 4:1),即(8000 + 2000)µl。 • 準備2組樣品和1組5 µl用於紫外分光光度計,另一組用於2-DE。 • 製備3個標準樣品(5、10、15 µl)。 • 另一組置於水浴中於1000℃加熱3分鐘。 • 用紫外分光光度計測試濃度。 8. 準備小瓶,並在小瓶中加入10 ml樣品緩衝液。 9. 檢查凝膠並用注射器將其放入小瓶中。 10. 放入搖床中搖晃1小時30分鐘。 11. 去除溶液,再次加入10 µl緩衝液兩次。 12. 製備分離凝膠,倒入並等待40分鐘。 13. 製備積層凝膠,並等待3-4小時。 14. 將機器執行到頂部(H3PO4)和底部(NaOH)。 15. 在去除水之前,將樣品倒入試管中。 16. 啟動機器(第一小時=200 V,第二小時=400 V,接下來的16小時=600 V)。

17. 將一維凝膠置於二維板上。 18. 製備瓊脂糖凝膠。 19. 放置標記和瓊脂糖凝膠。 20. 執行機器(一臺機器80 mA,兩臺機器160 mA),直到結束。 21. 分離凝膠,在製備考馬斯亮藍之前將其浸泡在考馬斯亮藍中。 22. 保持至少12小時。

銀染方案 1. 固定液 40% 乙醇

  1. 乙醇 100 ml
  2. 冰醋酸 25 ml
  3. 水 250 ml

注意:將凝膠浸泡在固定液中30分鐘。 2. 感光液

  1. 乙醇 75 ml
  2. 硫代硫酸鈉(5% w/v)10 ml
  3. 醋酸鈉(17 g)1包
  4. 水 250 ml

使用前:新增1.25 ml戊二醛(25% w/v) 注意:去除溶液。 加入感光液,搖晃至少30分鐘。

  1. 洗滌5分鐘。

3. 銀溶液

  1. 硝酸銀溶液(2.5% w/v)25 ml
  2. 水 250 ml

使用前:新增0.1 ml甲醛(37% w/v) 注意:搖晃20分鐘,洗滌1分鐘,重複兩次。 4. 顯影液

  1. 碳酸鈉(6.25 g)1包
  2. 水 250 ml
  3. 劇烈攪拌以溶解碳酸鈉。

注意:搖晃2-5分鐘。 5. 終止液

  1. EDTA-Na¬¬2 .2 H2 O (3.65 g) 1包
  2. 水 250 ml

注意:搖晃10分鐘,用雙蒸水洗滌5分鐘,重複三次。 6. 水溶液

  1. 雙蒸水

凝膠內消化

1. 在500 µl試管中加入200 µl DDW。 2. 用1 ml藍色吸頭將凝膠從凝膠板上分離。 切片凝膠,渦旋5分鐘並去除水。 3. 加入100 µl 25mM ABC/50% ACN,然後渦旋10分鐘,離心沉澱並去除溶液。 重複4-5次。

    1. 過度染色,直到變成白色,持續30分鐘。

4. 放入真空濃縮儀中。 5. 加入50 µl mM DTT/25 mM,然後在水浴中於56℃加熱45分鐘,然後離心沉澱並去除溶液。 6. 加入50 µl mM IAA/0.1% ABC,並在黑暗處放置30分鐘。 7. 不要離心沉澱,去除溶液。 8. 加入50 µl 0.1M ABC,渦旋5分鐘並去除溶液。 9. 加入50 µl 100% ACN,渦旋15分鐘並去除溶液。 10. 放入真空濃縮儀中30分鐘。 11. 加入25 µl胰蛋白酶(0.1 µg/µl),在4℃冰箱中放置45分鐘。 12. 加入35-40 µl 25mM ABC(pH 8.0),在水浴中於37℃孵育過夜,然後離心沉澱,提取胰蛋白酶。 13. 製備ACN/DDW/TFA (660:330:10) µl。 14. 在樣品中加入50 µl (ACN/DDW/TFA),放置30分鐘並過度染色,重複此步驟,離心沉澱,提取溶液並儲存。 重複此步驟。 15. 放入真空濃縮儀中2小時,直到樣品體積為10-20 µl。

MALDI-TOF/MS 分光光度計

1. 在凝膠塊中加入5%甲酸(考馬斯亮藍為10 µl,銀染為5 µl),然後用移液器移取。 2. 渦旋並離心沉澱。 3. 製備溶液A:0.1% TFA,溶液B:70% ACN,0.03% TFA,基質溶液:(0.1% TFA 500µl + 50% ACN 500µl + CHCA 10 mg)。 4. 使用C18吸頭,用溶液B:70% ACN,0.03% TFA沖洗Zip Tip(5-10次)。 5. 使用C18吸頭,用溶液A:0.1% TFA沖洗Zip Tip(5-10次)。 6. 將樣品在Zip Tip中上下移動(10次)。 7. 用溶液A:0.1% TFA脫鹽。 8. 將基質溶液(5-10 µl)放置在MALDI板上。 9. 乾燥後,加入溶液A:0.1% TFA並去除。 10. 加入DDW並去除。

提交者:Abu Hena Mostafa Kamal,博士生,植物蛋白質組學實驗室,作物科學系,農業學院,忠北國立大學,清州,361-763,韓國

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